为生物学实验。此试验是一项致突变性试验，检测整体动物骨髓细胞染色体畸变，以评价受试物致突变的可能性。

• 中文名称 哺乳动物骨髓细胞染色体畸变试验
• 外文名称 Mammalian bone marrow cell chromosome aberration test
• 标准号 GB 15193.6-2003
• 标准状态 现行

信息

　　发布日期 IssuanceDate: 2003-9-24

　　实施日期 ExecuteDate: 2004-5-1

　　首次发布日期 FirstIssuance Date: 199来自4-8-10

　　复审确认日期 ReviewAf化触无办firmance Date: 2004-10-14

　　计划编号 Plan No:

　　代替国标号 ReplacedStandard: GB 15193.6-1994

　　被代替国标号 Rep360百科lacedStandard:

　　废止时间 RevocatoryDate:

　　采用国际标准号 AdoptedInternational Standard No:

　　采标名称 Ado曾脸我短问ptedInternational Standard Name:

　　采用程度 ApplicationDegree:

　　采用国际标准 AdoptedInternational Standard:

　　国际兰标准分类号(ICS): 07.100.30

　　中国标准分类号(CCS): C53

　　标准类别 StandardS村ort: 方法

　　标准页码 Nu环运期束mber ofPages: 8

　　标准价格(元) Price(￥): 8

　　主管部门 Govern晚构怎可合工脸岩重毫or: 卫生部

　　归口单位 TechnicalCommittees: 卫生部

　　起草单位 DraftingCommittee: 中国疾病预防控制中心营养与食品安全所

主要委封居杆群沙明积云内容

　　哺乳动物骨髓细胞染色体畸变试验

　　InVivoMammalianBoneMarrowCe海爱前llChromosomeAberrat高酸销一财准编们ionTest

　　1范围

　　规范规定了哺乳动物骨髓细胞染色体畸变试验香实理尼亚白的基本原则、要求和方法。

　　规范适用于检测化具伤额额介亚过员对交攻妆品原料及其产品就钢损殖的遗传毒性。

　　2规范性引用文件

　　OECDGuidelinesforTestingofChemicals(外磁No.475,April1997)

　　3试验目的

　　试验是一项致突变性试验，检测整体动物骨髓细胞染色体畸变，以评价受试物致突变的可能性。

　　4定义

　　染色体型畸变(Chromosome-typeaberration)刚节重规单在操烟:染色体结构损伤，表现为在两个染色单体的相同位点均出现断裂或断裂重组的改变。

　　染色单体型畸变(Chromatid-typeaberration):染色体结构损伤，表现为染色单体断裂或染色单体断裂重组的还省改服关谁卷损伤。

　　染色体数目改变(Numerical-fypeaberration):哺乳动物细胞正常染色体数目的改变。

　　5试验基本原则

　　使哺乳动物(如大鼠或小鼠)经口等没京为厂止额或其它适宜途径染毒，动物处死前用细胞分裂中期阻断剂处理，季钱总致奏在处死后制备骨髓细胞染色体标本，分析染色体畸变。

　　6试验方法

　　6.1实验动物和饲养环境:选用健室商磁座肉丰边康成年大鼠或小鼠，每组每种性别至少5只。

　　实验动物及实验动物房应符合国家相应规定。

　　6.2受试物

　　6.2.1受试物配制:固体受试物应溶解或悬浮于适合的溶剂中，并稀释至一定浓度。液体受试物可直接使用或予以稀释。受试物应在使用前新鲜配制，否则就必须证实贮存不影响其稳定性。

　　6.2.2溶剂的选择:溶剂在所选用浓度下，不引起毒性效应，不与受试物发生化学反应。首选为水溶性溶剂。

　　6.2.3剂量设置:应进行预试验以选择最高剂量。当有毒性时，可以引起死亡或者抑制骨髓细胞有丝分裂指数(50%以上)为指标确定最高剂量。在第一次采集样品时，需设置3个可供分析的剂量，在第二次采集样品时，则仅需设置最高剂量组。

　　如果一次剂量为2000mg/kg体重时仍未引起毒性效应，则只设2000mg/kg体重剂量组。

　　6.3对照:在每项试验中，对每种性别均应设阴性对照组和阳性对照组。除不使用受试物外，其它处理与受试物组一致。

　　6.3.1阴性对照:除设溶剂对照(即仅含溶剂)外，如果没有文献资料或历史性资料证实所用溶剂不具有有害作用或致突变作用，还应设空白对照组。

　　6.3.2阳性对照:阳性对照物应能引起染色体结构畸变率明显高于背景资料。染毒途径可以不同于受试物。所选用的阳性对照物最好与受试物类别有关。可以使用下述物质:三亚乙基密胺(triethylenemelamine)、甲磺酸乙酯(ethylmethanesulphonate)、乙基亚硝基脲(ethylnitrosonrea)、丝裂霉素C(mytomycinC)和环磷酰胺(cyclophosphamide)。

　　6.4染毒方式:可采用经口或其它适宜的染毒方式。一般情况下，染毒1次，但分两次采集样品,即每组动物分两个亚组，亚组1于染毒后12h~18h处死并采集第一次样品;亚组2于亚组1处死后24h采集第二次样品。如果采用多次染毒，于末次染毒后12h~18h采集样品。于处死动物采集样品前腹腔注射细胞分裂中期阻断剂(如用秋水仙素，于处死前4h，按4mg/kg体重给药)。

　　6.5试验步骤

　　6.5.1用颈椎脱臼法处死动物，取出股骨，剔除肌肉等组织。

　　6.5.2剪去股骨两端，用注射器吸取5mL生理盐水，从股骨一端注入，用10mL离心管，从股骨另一端接取流出的骨髓细胞悬液。

　　6.5.3将细胞悬液以1000r/min的速度离心5min~7min，去除上清液。

　　6.5.4加入0.075mol/LKCl溶液7ml，用滴管将细胞轻轻地混匀，放入37℃水浴中低渗处理7min，加入2mL固定液(冰醋酸:甲醇=1:3)，混匀，以1000r/min速度离心5min~7min，弃去上清液。

　　6.5.5加入7mL固定液，混匀，固定7min，以1000r/min的速度离心7min，弃去上清液。

　　6.5.6用同法再固定1~2次，弃去上清液。

　　6.5.7加入数滴新鲜固定液，混匀。

　　6.5.8用混悬液滴片，自然干燥。

　　6.5.9用姬姆萨染液染色。

　　6.6读片和结果处理

　　6.6.1确定有丝分裂指数:包括所有处理组、阳性和阴性对照组(每只动物计数1000个细胞)。

　　6.6.2计数畸变细胞:对每只动物选择100个分散良好的中期分裂相，在显微镜油镜下进行读片。在读片时应记录每一观察细胞的染色体数目，对于畸变细胞还应记录显微镜视野的坐标位置及畸变类型。所得各组的染色体畸变率用X2检验进行统计学处理，以评价试验组和对照组之间是否有显著差异。

　　6.7结果评价

　　当受试物引起染色体畸变数具有统计学意义，并有与剂量相关的增加或者在一个剂量组出现染色体畸变细胞数明显增高，则判定具有致突变性。当结果不能得出，应改变试验条件进一步进行测试。

　　在评价时应综合考虑生物学意义和统计学意义。

　　7试验报告

　　报告应包括下列项

　　(1)受试物名称、理化性质、所用溶剂及配制;

　　(2)动物种属和品系、体重、数量、性别、来源(注明合格证号和动物级别);

　　(3)实验动物饲养环境，包括饲料来源、室温、相对湿度、实验动物房合格证号;

　　(4)剂量和组别:选择剂量的原则、剂量和组别、阴性和阳性对照物及剂量;

　　(5)试验条件和方法:染毒途径和染毒方案、细胞毒性测定方法、所用的细胞分裂中期阻断剂及其剂量和采样时间、简述制备染色体的方法;

　　(6)观察和分析的细胞数;

　　(7)畸变类型和数量及畸变率;

　　(8)结论。

　　8结果解释

　　阳性结果证明受试物具有引起该种受试动物骨髓细胞染色体畸变的能力。

　　阴性结果表明在本试验条件下受试物不引起该种受试动物骨髓细胞染色体畸变。